视频解说：

    小心地打开笼盖，避免过多干扰动物。应有足够的时间让大鼠意识到你的存在。抓取第一只大鼠时，操作者应用食指和拇指果断抓取大鼠肩部，不要犹豫，把大鼠放到保定装置。此处是硬的保定装置，也可以使塑料或者布的保定装置包或管。大鼠静脉注射部位在尾侧静脉，静脉血管扩张时更容易注射。可以在注射前把大鼠放在温箱里30分钟，或者把鼠尾放在温水里一分钟。清洁鼠尾，尤其是老龄大鼠，以便血管更容易辨认。

    静脉注射时要选择一个合适的针头，可以选择蝴蝶式输液器或能够最大限度的保证所有液体注入静脉，也可以使用的套针。抓住大鼠尾巴，在鼠尾基部从二分之一到三分之二处，用针尖刺入静脉。鼠尾静脉位于皮下，如果将鼠尾在操作者手指上轻微弯曲更容易插入静脉，针头进入静脉要与鼠尾平行。如果使用如图所示的“套管针”，在刺入尾巴皮肤时，要有一个较大的角度才能将针头刺入尾部静脉。然后，减小角度，进一步将针头插入静脉。使用套管针时，如果静脉穿刺成功，退出穿刺针时，导管腔中有血液流出。确定正确位置后，穿刺针退出，套管针向前直到完全进入静脉。

    无论使用套管针或者普通注射器，针头进入静脉时注射器柱塞应无阻力，静脉内血液被冲洗。应缓慢和稳定注射，尽量避免注射器和鼠尾变动。注射后，撤出针头，用棉签轻压住针眼，大约一分钟，并凝血。确定针眼不出血后，把大鼠小心的放回笼中，并放开大鼠。放开大鼠时，要抓紧大鼠直到它的脚接触到笼子底部才能轻轻地放开。放开大鼠之前，需要给大鼠标记，例如在尾巴上，以标明该大鼠已经经过注射。

操作技术：

    静脉注射给药，从技术上来看比较困难，常常要用到动物保定装置。这些器械应该认真选择，要与被注射动物大小适合。

    如果保定装置太小，会使动物受伤，并会干扰动物的呼吸。保定装置太大也会因保定时动物乱动而使其受伤。

    保定装置用过之后应彻底清洁，避免动物气味导致的其他动物感到压力或交叉感染。

    由于动物小幅运动会使皮下注射针脱离静脉，这时可以考虑使用其他给药方法，对大鼠尤其如此。这些内容将在未来提供的指导资料中有关导管和针的使用部分详细介绍。

​   虽然通过血液快速的缓冲以及快速的稀释可以促进更多的药物吸收，但是外周静脉注射可以刺激动物，在允许的情况下，应考虑采用生理盐水冲洗。

    促进大鼠尾部静脉扩张的常用方法是将其放在更温暖的环境中（例如28-30 ºC）30分钟，或将尾巴放入温水(30-35 ºC)中。如果使用保温箱或孵化器，温度应该认真监测。可以在保温箱中的动物笼子附近放一根电子温度计，因为保温箱保温箱自带的温度计通常不那么准确。

视频解说：

  小心地打开小鼠笼盖，避免过多干扰动物。应有足够的时间让小鼠意识到你的存在。抓取第一只小鼠时，操作者应用食指和拇指果断抓取小鼠尾根部，不要犹豫。抓紧小鼠尾根部，将小鼠从笼底提起，放到你的手臂或笼盖上。轻轻向后拉，使小鼠前爪抓住笼盖。用你另外一只手的食指和拇指，抓住小鼠颈背松弛的皮肤以避免小鼠的头部运动。然后，抓住小鼠的颈背和尾根部，提起小鼠并放到一个保定装置上。

小鼠静脉注射部位在尾侧静脉，静脉血管扩张时更容易注射。可以在注射前把小鼠放在温箱里30分钟，或者把鼠尾放在温水里一分钟。白色鼠的尾静脉好辨认，但黑色鼠尾静脉较难辨认。抓住鼠尾，在鼠尾基部从二分之一到三分之二处，用针尖刺入静脉。鼠尾静脉位于皮下，如果将鼠尾在操作者手指上轻微弯曲更容易插入静脉，针头进入静脉要与鼠尾平行。

静脉注射时，注射器柱塞应无阻力，注射时静脉内血液被冲洗。应缓慢和稳定注射，尽量避免注射器和鼠尾变动。注射后，撤出针头，轻压针眼，等出血凝固后把小鼠放回笼子。放开小鼠时，要抓紧小鼠，直到小鼠的脚接触到笼子底部才能轻轻地放开。放开小鼠之前，需要给小鼠标记，例如在尾部上，以标明该小鼠已经经过注射。

操作技术：

     静脉注射给药从技术上来看比较困难，通常要用到保定装置。这些器械应该小心选择，要与被注射动物大小适合。如果保定装置太小，会使动物受伤，并会干扰动物的呼吸。保定装置太大也会因保定时动物乱动而使其受伤。

    保定装置用过之后应彻底清洁，避免动物气味导致的其他动物感到压力或交叉感染。

    虽然通过血液快速缓冲以及快速稀释可以促进更多的药物吸收，但是外周静脉注射可能导致刺激，在某些情况下应当考虑采用生理盐水冲洗。

    促进小鼠尾部静脉扩张的常用方法是将其放在更温暖的环境中（例如28-30 ºC）30分钟，或将尾巴放入温水(30-35 ºC)中。如果使用暖箱或保温箱，温度应该认真监测。可以在保温箱中的动物笼子附近放一根电子温度计，因为保温箱自带的温度计通常不那么准确。